+7 (727) 250 00 11
+7 (776) 250 05 58

ISSN 2225-806X

ВОПРОСЫ АНТИБИОТИКОРЕЗИСТЕНТНОСТИ PS.AERUGINOSA, ИЗОЛИРОВАННОЙ ИЗ РАЗЛИЧНЫХ БИОТОПОВ ДЕТЕЙ

Автор: К.И. Билялова, Ж.С. Темирбаева, А.Ж. Аринова
Место работы: Научный центр педиатрии и детской хирургии Министерства здравоохранения и социального развития Республики Казахстан Казахстан, Алматы

Аннотация

Установлена наибольшая высеваемость Рs.aeruginosa из  мазков различных биотопов, далее по частоте выявляемости  возбудителя определена мокрота, затем моча, фекалии и смывы. Изучена антибиотикорезистентность  Ps.aeruginosa к наиболее часто применяемым в клинике антибактериальным препаратам. Использованы современные методы микробиологической диагностики: микробиологический анализатор Walk  away 40 США и компьютерная программа антибиотикорезистентности  WHONET.   Препаратами выбора   определены следующие антибиотики:  ципрофлоксацин, офлоксацин, меропенем, имипенем, цефтазидим, гентамицин,  полимиксин. Выявлено, что активность препарата в отношении возбудителя зависит от биотопа выделенного штамма.
Ключевые слова: дети, биотоп, внутрибольничная инфекция, антибиотикорезистентность, Рs.aeruginosa.

Введение

Внутрибольничные инфекции (ВБИ) являются актуальной проблемой здравоохранения. Распространение госпитальных штаммов, полирезистентных к антимикробным препаратам определяет необходимость мониторинга локальной структуры антибиотикорезистентности патогенов ВБИ в условиях конкретного стационара [1,2]. Система микробиологического мониторинга включает видовую идентификацию клинических изолятов в соответствии с современной таксоманией, корректное определение чувствительности к антибиотикам изолированных штаммов, хранение и доступность для анализа данных микробиологических исследований за длительный промежуток времени. Точная идентификация возбудителей с установлением этиологии внутрибольничных инфекций зависит от диагностических методик, используемых микробиологической лабораторией [3,4]. При тестировании антибактериальных препаратов необходимо придерживаться установленных ВОЗ правил. Основным из них является включение в тестирование препаратов из различных групп, согласно чувствительности к ним возбудителей. Для получения адекватных результатов необходима постановка тестов на чувствительность в одной чашке только на шесть препаратов. Разработка рациональных подходов к использованию антимикробных препаратов входит в задачу работников лечебных учреждений. Важная роль лаборатории заключается в точной идентификации микроорганизма с установлением его родового и видового наименования с определением антибиотикорезистентности.        

Повсеместная распространенность Pseudomonas aeruginosa (особенно в стационарах), делает ее основным возбудителем раневых инфекций и осложнений при ряде состояний (злокачественный отит наружного уха, эндокардиты, остеомиелиты, периректальные абсцессы, пневмонии, септицемии, менингиты, гнойные тромбофлебиты, инфекции мочеполовой системы) [5,6]. Pseudomonas aeruginosa устойчива ко многим широко используемым антибиотикам, включая цефалоспорины 1-го и 2-го поколения. Эффективными являются только такие лактамные антибиотики, как пиперациллин, аминогликозиды и фторхинолоны [7]. Путь передачи Pseudomonas aeruginosа- контактный.

Цель работы 

Изучение и сравнение спектра антибиотикорезистентности Ps.aeruginosa, изолированной из различных биотопов детей, находившихся на стационарном лечении в 2009-2013 годах в Научном центре педиатрии и детской хирургии к наиболее часто применяемым препаратам с использованием современных методов микробиологической диагностики.

Материалы и методы

Использованы общепринятые и современные методы микробиологической диагностики: микробиологический анализатор Walk away 40 США, компьютерная программа антибиотикорезистентности WHONET.

Определение антибиотикорезистентности проводилось диско-диффузионным методом на среде Мюллер-Хинтона, АГВ, а, также, с помощью микробиологического анализатора в соответствии с рекомендациями Национального комитета по клиническим лабораторным стандартам (NCCLS) США. В работу для тестирования включены антибиотики, рекомендованные данным комитетом [7,8].

В микробиологический анализатор помещается чистая культура с установленной грам–принадлежностью. В зависимости от наличия дисков составляли комбинации из 6 антибиотиков. Протестировано 580 штаммов, изолированных из мазков различных локусов, мокроты, бронхиальных смывов, мочи и фекалий.

Результаты

Установлена наибольшая высеваемость Ps.aeruginosa из мазков различных биотопов, далее по частоте выявляемости возбудителя определена мокрота, затем моча и фекалии (табл.1)

Таблица 1 — Частота выделения  Ps.aeruginosa из различных биотопов детей

ВОПРОСЫ АНТИБИОТИКОРЕЗИСТЕНТНОСТИ   PS.AERUGINOSA, ИЗОЛИРОВАННОЙ ИЗ  РАЗЛИЧНЫХ БИОТОПОВ ДЕТЕЙ

Препаратами выбора в отношении исследованных штаммов Ps.aeruginosa установлены следующие антибиотики: из фторхинолонов — ципрофлоксацин, офлоксацин; карбапенемов — меропенем,  имипенем; цефалоспоринов – цефтазидим; аминогликозидов — гентамицин; а также  полимиксин. Выявлено, что активность препарата в отношении возбудителя зависит от биотопа выделенного штамма.

Указанные препараты: азлоциллин, ципрофлоксацин, имипенем, меропенем, полимиксин  и гентамицин в 77.3-86,6 % проявили  активность в отношении штаммов Ps.aeruginosa  из мазков различных локусов (см. рис.1)

Рs.aeruginosa, выделенная из мокроты, наиболее  чувствительна к азлоциллину, ципрофлоксацину, имипенему (71,8 -87,%)  штаммов (рис. 2).

ВОПРОСЫ АНТИБИОТИКОРЕЗИСТЕНТНОСТИ   PS.AERUGINOSA, ИЗОЛИРОВАННОЙ ИЗ  РАЗЛИЧНЫХ БИОТОПОВ ДЕТЕЙ
ВОПРОСЫ АНТИБИОТИКОРЕЗИСТЕНТНОСТИ   PS.AERUGINOSA, ИЗОЛИРОВАННОЙ ИЗ  РАЗЛИЧНЫХ БИОТОПОВ ДЕТЕЙ

Рs.aeruginosa, изолированная из фекалий, проявила наибольшую чувствительность к имипенему, ципрофлоксацину и азлоцилину (78-96%)  (рис. 4).

Ps.aeruginosa, изолированная из смывов, показала одинаковую чувствительность  к азлоциллину,  цефтазидиму,  полимиксину (рис.5).

ВОПРОСЫ АНТИБИОТИКОРЕЗИСТЕНТНОСТИ   PS.AERUGINOSA, ИЗОЛИРОВАННОЙ ИЗ  РАЗЛИЧНЫХ БИОТОПОВ ДЕТЕЙ

Выводы

1. Препаратами выбора в лечении нозокомиальных инфекций, вызванных Ps.aeruginosa, установлены азлоциллин, ципрофлоксацин, офлаксацин, имипенем, меропенем, полимиксин, цефтазидим, гентамицин.

2. При выборе препарата для эмпирической терапии следует учитывать локус выделения возбудителя, а также локальные и региональные данные антибиотикорезистентности.             

3. Рекомендуется комбинированная терапия, ограничение и цикличность применения антибиотиков. 

4. Использование анализатора позволило сократить время исследования на 16-20 часов, расширить спектр идентифицируемых возбудителей до родового, видового состава (316 видов) и перечень тестируемых антибактериальных препаратов.

5. Мониторинг антибиотикочувствительности возбудителей инфекции у больных позволяет своевременно выявить формирование резистентности бактерий к лекарственным препаратам и внести изменения в стратегию и тактику антибиотикотерапии для госпитальной инфекции.

6. Микробиологический мониторинг — важное условие адекватной антибактериальной терапии нозокомиальных инфекций.

Список литературы:

1. Омарова С.М., Алиева А.И. Выбор эффективной антибактериальной терапии госпитальных инфекций мочевыводящих путей. Проблемы медицинской микологии. — 2013, — т.15, №2, -108.

2. Решедько Г.К., Рябкова Е.Л., Фарещук А.Н., Страчунский Л.С. Неферментирующие грамотрицательные возбудители нозокомиальных инфекций в ОРИТ России: проблемы антибиотикорезистентности. Клиническая антимикробная химиотерапия, — 2006, — т.8, №3, — С.17.

3. Баранова А.А., Страчунский Л.С. Применение антибиотиков у детей в амбулаторной практике. Методические рекомендации. Клиническая антимикробная химиотерапия. — 2007, — т. 9, №3, — С. 200-210.

4. Митрохин С.Д. Значение синегнойной палочки в инфекционной патологии человека. Инфекция и антимикробная терапия. — 2004, — т. 6, №3, 64-67.

5. Navon-Venezia S., Ben-Ami R., Carmeli Y. Update on Рs.aeruginosa and Acinetobacter baumannii infections in the healthcare setting. Curr Opin Infect Dis 2005; -18; 306-313.

6. Страчунский Л.С., Решедько Г.К., Стецюк О.У., Андреева А.С. Сравнительная активность антисинегнойных антибиотиков в отношении нозокомиальных штаммов Ps.aeruginosa, выделенных в отделениях реанимации и интенсивной терапии. Клиническая антимикробная химиотерапия. — 2003, — №5, — С. 35-46.

7. Андреева И.А. Изучение антибиотикорезистентности микроорганизмов с использованием компьютерной программы WHONET. Проблемы медицинской микологии. — 2013, — т. 15, №2. – 54 с.

8. National Committee for Clinical Laboratory Standards. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing: 14th informational supplement. NCCLS document M 100-S, 14.2004. National Committee for Clinical Laboratory Standards, Wayne, PA. (in Russ)

References

1. Omarova S.M., Alieva A.I. Vyibor effektivnoy antibakterialnoy terapii gospitalnyih infektsiy mochevyivodyaschih putey. Problemyi meditsinskoy mikologii. — 2013, — t.15, №2, -108.

2. Reshedko G.K., Ryabkova E.L., Fareschuk A.N., Strachunskiy L.S. Nefermentiruyuschie gramotritsatelnyie vozbuditeli nozokomialnyih infektsiy v ORIT Rossii: problemyi antibiotikorezistentnosti. Klinicheskaya antimikrobnaya himioterapiya, — 2006, — t.8, №3, — S.17.

3. Baranova A.A., Strachunskiy L.S. Primenenie antibiotikov u detey v ambulatornoy praktike. Metodicheskie rekomendatsii. Klinicheskaya antimikrobnaya himioterapiya. — 2007, — t. 9, №3, — S. 200-210.

4. Mitrohin S.D. Znachenie sinegnoynoy palochki v infektsionnoy patologii cheloveka. Infektsiya i antimikrobnaya terapiya. — 2004, — t. 6, №3, 64-67.

5. Navon-Venezia S., Ben-Ami R., Carmeli Y. Update on Рs.aeruginosa and Acinetobacter baumannii infections in the healthcare setting. Curr Opin Infect Dis 2005; -18; 306-313.

6. Strachunskiy L.S., Reshedko G.K., Stetsyuk O.U., Andreeva A.S. Sravnitelnaya aktivnost antisinegnoynyih antibiotikov v otnoshenii nozokomialnyih shtammov Ps.aeruginosa, vyidelennyih v otdeleniyah reanimatsii i intensivnoy terapii. Klinicheskaya antimikrobnaya himioterapiya. — 2003, — №5, — S. 35-46.

7. Andreeva I.A. Izuchenie antibiotikorezistentnosti mikroorganizmov s ispolzovaniem kompyuternoy programmyi WHONET. Problemyi meditsinskoy mikologii. — 2013, — t. 15, №2. – 54 s.

8. National Committee for Clinical Laboratory Standards. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing: 14th informational supplement. NCCLS document M 100-S, 14.2004. National Committee for Clinical Laboratory Standards, Wayne, PA. (in Russ)

ТҮЙІНДЕМЕ

 Балалардағы әртүрлі биотоптан бөлінген Ps.aeruginosa

антибиотикотұрақтылық сұрақтары

К.И. Билялова, Ж.С. Темирбаева, А.Ж. Аринова,

ҚР денсаулық және әлеуметтік дамуының министрлігініңпедиатрия және балалар хирургиясының ғылыми орталығы 

Қазақстан, Алматы

 Әр түрлі биотоптардың сүртімдерінен Рs.aeruginosa біршама бөлігенің анықталды, бұдан әрі ол қоздырғыштың бөліну жиілігі  қақырықтан,одан кейін зәрден,нәжістен және шайындылардан аныкталды. Рs.aeruginosa антибиотикотұрақтылығы клиникадағы жиі қолданылатын антибактериальды препараттар зертелді. Микробиологиялық диагностикада заманауи әдістер қолданылды: микробиологиялық анализатор Walk away 40США және  компьютерлік антибиотикотұрақтылық   WHONET бағдарламасы. Препараттар талғамымен келесі антибиотиктер анықталды:  ципрофлоксацин тағайынды, офлоксацин,   меропенем,  имипенем,  цефтазидим, гентамицин,  полимиксин. Қоздырғышқа қатысты препаратың белсенділігі штаммнан бөлінген биотопқа байланысты.

Түйін сөздер: балалар,биотоп, аурухана ішіндегі инфекциялар, антибиотикотұрақтылық, Рs.aeruginosa.

Summary 

Questions of antibiotic resistance Рs.aeruginosaisolated from the different biotopes of children

K.I Bilyalova, A.J. Arinova, J.S Temirbaeva     

Scientific Center of Pediatrics and Pediatric Surgery ministry of public welfare and health protection of Republic of Kazakhstan,

Kazakhstan, Almaty

The most is set inoculation Рs.aeruginosa from the strokes of different biotopes; further on frequency of exposed of causative agent a sputum is certain, after wetting feces. Determination of antibiotic resistance Рs.aeruginosa. Used innovative methods of microbiological diagnostics: microbiological analyzer Walk away 40 United States and the computer program of antibiotic WHONET.  Оf the strains Ps.aeruginosa identified the following antibiotics: ciprofloxacin , ofloxacin; meropenem, imipenem; ceftazidime; gentamicin; polymyxin. Revealed that the activity of the drug against the pathogen depends on the habitat of the selected strain.

Keywords: children, habitat, nosocomial infection, antibiotic resistance, Рs.aeruginosa